在大腸桿菌感受態細胞的製備及轉化實驗中

2021-03-03 20:46:59 字數 2962 閱讀 2440

1樓:翦子美女

兩個目的:1熱激後的大腸桿菌細胞比較脆弱,培養可以恢復細胞的活性;2進一步培養,提高菌液中大腸桿菌的濃度。

為什麼大腸桿菌感受態細胞製備和轉化

2樓:元霜

轉化實驗用bai液態的lb是為了讓細du胞恢復培

zhi養,也有人稱

之為讓其孵育,質dao粒或其他經專在液態lb中恢復屬培養後再塗布平板(固態培養基),是為了分散開,以培養單克隆。一般經37度倒置培養12-16h後,就可以看到有單個克隆長出,就可挑取了。

大腸桿菌感受態細胞轉化實驗正負對照

3樓:唯愛

轉化a.將-70 0c下保bai存的感受態細胞(

du200μl),室溫下

zhi解凍後放置於冰上。dao

b.將nd-pucm-t質粒dna溶液(不超過50ng)或回pcr產物與pucm-t質粒的答連結產物,體積不超過10μl,輕輕搖勻,冰上放置30min。

c.42 0c水浴中熱擊90s或370c水浴中熱擊5min,熱擊後迅速置於冰上冷卻3-5min。

d.向管中加入預熱的1 ml lb液體培養基(不含ampr),混勻後370c下**培養1小時使細胞恢復正常生長狀態,並表達質粒編碼的抗生素抗性基因(ampr)。

e.取上述菌液20-100l塗布於含amp的篩選平板上,正面向上放置半小時,等菌液完全乾後倒置平皿370c下培養16-24hr。

對照 1:以蒸餾水代替puc質粒dna,其它同上。

對照 2:以蒸餾水代替puc質粒dna,在步驟e 中,取5μl塗布於不含amp的篩選平板上。

計算:轉化子總數=菌落數×稀釋倍數×轉化反應總體積/塗布體積

轉化頻率= 轉化子總數/質粒dna量

感受態細胞總數=對照2菌落數×稀釋倍數×菌液總體積/塗板菌液體積

感受態細胞轉化效率=轉化子總數/感受態細胞總數

如何製備大腸桿菌感受態細胞

4樓:匿名使用者

大腸桿菌感受態細胞的製備和轉化

準備:一. 材料

e. coli dh5α菌株: rˉ,mˉ,ampˉ;pbs質粒dna: 購買或實驗室自制,eppendorf管。

二. 裝置

恆溫搖床,電熱恆溫培養箱,臺式高速離心機,無菌工作臺,低溫冰箱, 恆溫水浴鍋, 製冰機, 分光光度計,微量移液槍。

三. 試劑

1.lb固體和液體培養基

2.amp母液

3.含amp的lb固體培養基:將配好的lb固體培養基高壓滅菌後冷卻至60°C左右,加入amp儲存液,使終濃度為50ug/ml,搖勻後鋪板。

4.麥康凱培養基(maconkey agar):取52g麥康凱瓊脂,加蒸餾水1000ml,微火煮沸至完全溶解,高壓滅菌,待冷至60°C左右加入amp儲存液使終濃度為50ug/ml,然後搖勻後塗板。

5.0.05mol/l cacl2溶液:稱取0.28g cacl2(無水,分析純),溶於50ml重蒸水中,定容至100ml,高壓滅菌。

6.含15%甘油的0.05mol/l cacl2: 稱取0.28g cacl2(無水,分析純),溶於50ml重蒸水中,加入15ml甘油,定容至100ml,高壓滅菌。

操作步驟:

一、 受體菌的培養

從lb平板上挑取新活化的e. coli dh5α單菌落,接種於3-5ml lb液體培養基中,37°C下振盪培養12小時左右,直至對數生長後期。將該菌懸液以1:

100-1:50的比例接種於100ml lb液體培養基中,37°C振盪培養2-3小時至od600 =0.5左右。

二、 感受態細胞的製備 ( cacl2 法)

1、將培養液轉入離心管中,冰上放置10分鐘,然後於4°C下3000g離心10分鐘。

2、 棄去上清,用預冷的0.05mol/l的cacl2 溶液10ml輕輕懸浮細胞,冰上放置15-30分鐘後,4°C下3000g離心10分鐘。

3、棄去上清,加入4ml預冷含15%甘油的0.05mol/l的cacl2 溶液,輕輕懸浮細胞,冰上放置幾分鐘,即成感受態細胞懸液。

4、 感受態細胞分裝成200μl的小份,貯存於-70°C可儲存半年。

三、 轉化

1、從-70°C冰箱中取200μl感受態細胞懸液,室溫下使其解凍,解凍後立即置冰上。

2、 加入pbs質粒dna溶液(含量不超過50ng,體積不超過10μl),輕輕搖勻,冰上放置30分鐘後。

3、42°C水浴中熱擊90秒或37°C水浴5分鐘,熱擊後迅速置於冰上冷卻3-5分鐘。

4、向管中加入1ml lb液體培養基(不含amp),混勻後37°C振盪培養1小時,使細菌恢復正常生長狀態,並表達質粒編碼的抗生素抗性基因(ampr )。

5、將上述菌液搖勻後取100μl 塗布於含amp的篩選平板上,正面向上放置半小時,待菌液完全被培養基吸收後倒置培養皿,37°C培養16-24小時。

同時做兩個對照:

對照組1: 以同體積的無菌雙蒸水代替dna溶液,其它操作與上面相同。此組正常情況下在含抗生素的lb平板上應沒有菌落出現。

對照組2: 以同體積的無菌雙蒸水代替dna溶液,但塗板時只取5μl 菌液塗布於不含抗生素的lb平板上,此組正常情況下應產生大量菌落。

四、 計算轉化率

統計每個培養皿中的菌落數。

轉化後在含抗生素的平板上長出的菌落即為轉化子,根據此皿中的菌落數可計算出轉化子總數和轉化頻率,公式如下:

轉化子總數=菌落數×稀釋倍數×轉化反應原液總體積/塗板菌液體積

轉化頻率**化子數/每mg質粒dna)=轉化子總數/質粒dna加入量(mg)

感受態細胞總數=對照組2菌落數×稀釋倍數×菌液總體積/塗板菌液體積

感受態細胞轉化效率=轉化子總數/感受態細胞總數

[注意] 本實驗方法也適用於其它e.coli受體菌株的不同的質粒dna的轉化。但它們的轉化效率並不一定一樣。

有的轉化效率高,需將轉化液進行多梯度稀釋塗板才能得到單菌落平板,而有的轉化效率低,塗板時必須將菌液濃縮(如離心),才能較準確的計算轉化率。

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