請教sds page高手,配製sds page 脫色液用什麼水

2022-04-12 02:46:00 字數 2945 閱讀 9719

1樓:solarbio_晨

sds-page常見問題:

⒈ 配膠緩衝液系統對電泳的影響?

在sds-page不連續電泳中,制膠緩衝液使用的是tris-hcl緩衝系統,濃縮膠是ph6.7,分離膠ph8.9;而電泳緩衝液使用的tris-甘氨酸緩衝系統。

在濃縮膠中,其ph環境呈弱酸性,因此甘氨酸解離很少,其在電場的作用下,泳動效率低;而cl離子卻很高,兩者之間形成導電性較低的區帶,蛋白分子就介於二者之間泳動。由於導電性與電場強度成反比,這一區帶便形成了較高的電壓梯度,壓著蛋白質分子聚集到一起,濃縮為一狹窄的區帶。當樣品進入分離膠後,由於膠中ph的增加,呈鹼性,甘氨酸大量解離,泳動速率增加,直接緊隨氯離子之後,同時由於分離膠孔徑的縮小,在電場的作用下,蛋白分子根據其固有的帶電性和分子大小進行分離。

所以,ph對整個反應體系的影響是至關重要的,實驗中在排除其他因素之後仍不能很好解決問題的情況,應首要考慮該因素,當然其他的因素也可以從多方面考慮。

⒉ 樣品如何處理?

根據樣品分離目的不同,主要有三種處理方法:還原sds處理、非還原sds處理、帶有烷基化作用的還原sds處理。

1)還原sds處理:在上樣buffer中加入sds和dtt(或β-巰基乙醇)後,蛋白質構象被解離,電荷被中和,形成sds與蛋白相結合的分子,在電泳中,只根據分子量來分離。一般電泳均按這種方式處理,樣品稀釋適當濃度,加入上樣buffer,離心,沸水煮5min,再離心加樣。

2)帶有烷基化作用的還原sds處理:碘乙酸胺的烷基化作用可以很好的並經久牢固的保護sh基團,得到較窄的譜帶;另碘乙酸胺可捕集過量的dtt,而防止銀染時的紋理現象。100ul樣品緩衝液中10ul 20%的碘乙酸胺,並在室溫保溫30min。

3)非還原sds處理:生理體液、血清、尿素等樣品,一般只用1%sds沸水中煮3min,未加還原劑,因而蛋白摺疊未被破壞,不可作為測定分子量來使用。

⒊ sds-page電泳凝膠中各主要成分的作用?

聚丙烯醯胺的作用:丙烯醯胺與為蛋白質電泳提供載體,其凝固的好壞直接關係到電泳成功與否,與促凝劑及環境密切相關;

制膠緩衝液:濃縮膠選擇ph6.8,分離膠選擇ph8.

8,選擇tris-hcl系統,temed與ap:ap 催化劑,催化單丙和雙丙聚合成聚丙烯醯胺。temed四甲基乙二胺,催凝劑,加速ap催化作用;十二烷基硫酸鈉(sds):

陰離子去汙劑,作用有四:去蛋白質電荷、解離蛋白質之間的氫鍵、取消蛋白分子內的疏水作用、去多肽摺疊。

⒋ 提高sds-page電泳解析度的途徑?

聚丙烯醯胺的充分聚合,可提高凝膠的解析度。建議做法:待凝膠在室溫凝固後,可在室溫下放置一段時間使用。

忌即配即用或4度冰箱放置,前者易導致凝固不充分,後者可導致sds結晶。一般凝膠可在室溫下儲存4天,sds可水解聚丙烯醯胺。

⒌「 微笑」(兩邊翹起中間凹下)形帶原因?

主要是由於凝膠的中間部分凝固不均勻所致,多出現於較厚的凝膠中。

處理辦法:待其充分凝固再作後續實驗。

⒍ 「皺眉」(兩邊向下中間鼓起)形帶原因?

主要出現在蛋白質垂直電泳槽中,一般是兩板之間的底部間隙氣泡未排除乾淨。

處理辦法:可在兩板間加入適量緩衝液,以排除氣泡。

⒎ 為什麼帶出現拖尾現象?

主要是樣品融解效果不佳或分離膠濃度過大引起的。此外可能是灌膠時分離膠過多導致濃縮膠很少,不能起到濃縮作用,沒有把樣品壓成一條線。

處理辦法:加樣前離心;選擇適當的樣品緩衝液,加適量樣品促溶劑;電泳緩衝液時間過長,重新配製;降低凝膠濃度;灌膠時分離膠不要過多。

⒏ 為什麼帶出現紋理現象?

主要是樣品不溶性顆粒引起的。

處理辦法:加樣前離心;加適量樣品促溶劑。

⒐ 什麼是「鬼帶」,如何處理?

「鬼帶」就是在跑大分子構象複雜的蛋白質分子時,常會出現在泳道頂端(有時在濃縮膠中)的一些大分子未知條帶或加樣孔底部有沉澱,主要由於還原劑在加熱的過程中被氧化而失去活性,致使原來被解離的蛋白質分子重新摺疊結合和亞基重新締合,聚合成大分子,其分子量要比目標條帶大,有時不能進入分離膠。但它卻於目標條帶有相同的免疫學活性,在wb反應中可見其能與目標條帶對應的抗體作用。

處理辦法:在加熱煮沸後,再新增適量的dtt或beta巰基乙醇,以補充不足的還原劑;或可加適量edta來阻止還原劑的氧化。

⒑ 為什麼溴酚藍不能起到指示作用?

我們在實驗中常會遇到溴酚藍已跑出板底,但蛋白質卻還未跑下來的現象。主要與緩衝液和分離膠的濃度有關。

處理辦法:更換正確ph值的buffer;降低分離膠的濃度。

⒒ 為什麼電泳的條帶很粗?

電泳中條帶很粗是常見的事,主要是未濃縮好的原因。

處理辦法:適當增加濃縮膠的長度;保證濃縮膠貯液的ph正確(6.7);適當降低電壓;

⒓ 為什麼電泳電壓很高而電流卻很低呢?

這種現象一般初學者易出現。比如電壓50v以上,可電流卻在5ma以下。主要是由於電泳槽沒有正確裝配,電流未形成通路。

包括:a.內外槽裝反;b.

外槽液過少;c.電泳槽底部的絕緣體未去掉(比如倒膠用的橡膠皮)。

處理辦法:電泳槽正確裝配即可。

⒔ 濃縮膠與分離膠斷裂、板間有氣泡對電泳有影響嗎?

這主要出現在初學者中,一般對電泳不會有太大的影響。前者主要原因是拔梳子用力不均勻或過猛所致;後者是由於在解除制膠的夾子後,板未壓緊而致空氣進入引起的。

⒕ 凝膠時間不對,或慢或快,怎麼回事?

通常膠在30min-1h內凝。如果凝的太慢,可能是temed,aps劑量不夠或者失效。aps應該現配現用,temed不穩定,易被氧化成黃色。

如果凝的太快,可能是aps和temed用量過多,此時膠太硬易裂,電泳時易燒膠。

2樓:匿名使用者

藥品配製有問題,或者是藥品失效了,重新配藥品

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3樓:北京索萊寶科技****

250ml 95%乙醇+80ml冰醋酸,定容到1000ml,即可.

或者100ml 95%乙醇+50ml冰醋酸,定容到1000ml,即可.

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