1樓：匿名使用者
血清蛋白醋酸纖維薄膜電泳與濾紙相比較,有以下優點 。
（1）醋酸纖維素薄膜對蛋白質樣品吸附極少，無「拖尾」現象，染色後背景能完全脫色，各種蛋白質染色帶分離清晰，因而提高了測定的精確性。
（2）快速省時.由於醋酸纖維素薄膜親水性較濾紙小，薄膜中所容納的緩衝液也較少，電滲作用小，電泳時大部分電流是由樣品傳導的，所以分離速度快，電泳時間短，一般電泳45—60min即可，加上染色，脫色，整個電泳完成僅需90min左右。
（3）靈敏度高,樣品用量少。血清蛋白僅需2μl血清,甚至加樣體積少至0.1μl，僅含5μg蛋白樣品也可得到清晰的分離帶。
臨床醫學檢驗利用這一點，檢測在病理情況下微量異常蛋白的改變。
（4）應用面廣。某些蛋白在紙上電泳不易分離，如胎兒甲種球蛋白，溶菌酶，胰島素，組蛋白等用醋酸纖維薄膜電泳能較好地分離。
（5）醋酸纖維素薄膜電泳染色後，經冰乙酸，乙醇混合液或其它溶液浸泡後可製成透明的幹板，有利於掃描定量及長期儲存。
2樓：匿名使用者
快遞：一般用於信件、包裹等小的物體，是上門服務的，也是送貨上門的，**比較高，多是私人使用；
快運：一般用於大宗的貨物，屬於物流了，多是企業使用，雖然也是上門取件，但是不會送貨到門，要收件人自己去取的，**相對來說比較低些。
（1）醋酸纖維素薄膜對蛋白質樣品吸附極少，無「拖尾」現象，染色後背景能完全脫色，各種蛋白質染色帶分離清晰，因而提高了測定的精確性。
（2）快速省時.由於醋酸纖維素薄膜親水性較濾紙小，薄膜中所容納的緩衝液也較少，電滲作用小，電泳時大部分電流是由樣品傳導的，所以分離速度快，電泳時間短，一般電泳45—60min即可，加上染色，脫色，整個電泳完成僅需90min左右。
（3）靈敏度高,樣品用量少。血清蛋白僅需2μl血清,甚至加樣體積少至0.1μl，僅含5μg蛋白樣品也可得到清晰的分離帶。
臨床醫學檢驗利用這一點，檢測在病理情況下微量異常蛋白的改變。
（4）應用面廣。某些蛋白在紙上電泳不易分離，如胎兒甲種球蛋白，溶菌酶，胰島素，組蛋白等用醋酸纖維薄膜電泳能較好地分離。
（5）醋酸纖維素薄膜電泳染色後，經冰乙酸，乙醇混合液或其它溶液浸泡後可製成透明的幹板，有利於掃描定量及長期儲存。
為什麼血清蛋白電泳實驗中會出現一個班絕大部分同學條帶無法分開的現象
3樓：匿名使用者
電泳時間太短，天氣乾燥，緩衝液容易揮發，分離速度就慢，電流強度不夠
4樓：匿名使用者
我記得我以前有四條的啊 ~頂多有點模糊 師傅你的也太失敗了吧
血清蛋白電泳時，條帶前面是什麼，順序是什麼，為什麼
5樓：匿名使用者
alb,α1-球蛋白,α2-球蛋白,β-球蛋白,γ-球蛋白
蛋白質和氨基酸都是兩性電解質,其分子中的羧基（—cooh）和氨基（—nh2）在溶液中均可解離.血清蛋白質的等電點均低於ph7.0,在ph8.
6的緩衝液中帶負電,向陽極移動,分子小且帶電荷多者,則移動速度較快,反之亦然.根據在電場中移動速度之快慢則將血清蛋白分為alb,α1-球蛋白,α2-球蛋白,β-球蛋白及γ-球蛋白
6樓：匿名使用者
條帶前面是清蛋白順序是：清蛋白 α1球蛋白 α2球蛋白 β球蛋白 γ球蛋白原因是各種血清蛋白的帶電性和質量不同
血清蛋白電泳時，條帶前面是什麼、順序是什麼，為什麼
7樓：匿名使用者
條帶前面是清蛋白順序是：清蛋白 α1球蛋白 α2球蛋白 β球蛋白 γ球蛋白原因是各種血清蛋白的帶電性和質量不同
8樓：受映冬俟山
alb，α1-球蛋白
，α2-球蛋白，β-球蛋白，γ-球蛋白
蛋白質和氨基酸都是兩性電解質，其分子中的羧基（—cooh）和氨基（—nh2）在溶液中均可解離。血清蛋白質的等電點均低於ph7.0，在ph8.
6的緩衝液中帶負電，向陽極移動，分子小且帶電荷多者，則移動速度較快，反之亦然。根據在電場中移動速度之快慢則將血清蛋白分為alb，α1-球蛋白，α2-球蛋白，β-球蛋白及γ-球蛋白
血清蛋白電泳後各組分的顏色深淺為何不同?
9樓：匿名使用者
說明樣品中各個組分的含量不相同，在電泳後的膠上會出現各組分顏色深淺不一
在做血清蛋白醋酸纖維素薄膜電泳實驗時，為什麼只出現了兩條區帶，是不是因為我們點樣的醋酸纖維薄膜過幹
10樓：匿名使用者
這是由於血清滴加不均勻或者滴加過多，導致分離不良、不均勻，圖譜不齊。
11樓：依藍雨夕
不是。不知道出現的是哪兩條帶。也可能是本身樣品的問題只有兩種蛋白；也可能是染色不夠，條帶顏色淺的沒有顯現；也可能是漂洗過度等等
電泳分離血清蛋白電泳時為什麼點樣面朝下
12樓：貴高馳史飛
在這次實驗中，電極緩衝液ph為8.6。而幾種血清蛋白的等電點（pi）均小於它。
也就是說，電泳時，他們均帶正電荷，在電場中向正極移動，所以要將點樣端放於負極，這樣，他們就會向另一個方向移動（與點樣端相反）。如果你把它放在正極，那麼，通電以後，就僅僅能看到移動的最慢的一兩種蛋白，因為其他的會很快到頭。
13樓：cq蝶戀
說的問題
可能表述的有點問題，不太明白什麼意思。一般都是看電極了，緩衝液和蛋白的等電點來決定點樣孔是放在正極端還是負極端的
什麼叫點樣面向下？電泳時，電泳液的ph=8.6，該值大於蛋白質的等電點，所以蛋白質分子帶負電荷，因此，蛋白質在電場中向正極方向移動，所以加樣處是負極。
並要求蛋白質在移動時，必須在支撐物上移動。
14樓：匿名使用者
came的話，點樣面朝下是為了防止薄膜乾燥
血清蛋白電泳時，為什麼要把上層電泳槽接在負極上
15樓：擼管醬油男
[實驗九 血清蛋白質聚丙烯
醯胺凝膠
電泳] 【實驗目的】1.掌握聚丙烯醯胺凝膠電泳的原理。2.
熟悉聚丙烯醯胺凝膠電泳的操作過程。3.瞭解聚丙烯醯胺凝膠電泳的特點和應用範圍。
【實驗原理】1．聚丙烯醯胺凝膠的聚合原理聚丙烯醯胺凝膠(pag)是一種人工合成的凝膠，由丙烯醯胺（acrylam [蛋白質 血清 電泳 醯胺 聚丙烯 凝膠 緩衝液 電泳]
【實驗目的】
1.掌握聚丙烯醯胺凝膠電泳的原理。
2.熟悉聚丙烯醯胺凝膠電泳的操作過程。
3.瞭解聚丙烯醯胺凝膠電泳的特點和應用範圍。
【實驗原理】
1．聚丙烯醯胺凝膠的聚合原理聚丙烯醯胺凝膠(pag)是一種人工合成的凝膠，由丙烯醯胺（acrylamide簡寫為acr）和交聯劑甲叉雙丙烯醯胺（n，n1-methylene-bisacrylamide，簡寫bis）在催化劑（過硫酸胺或核黃素）的作用下，聚合成含有醯胺基側鏈的脂肪族長鏈，相鄰的兩個鏈通過甲叉橋交聯形成就具有三維網狀結構的聚丙烯醯胺凝膠。為了加速聚合，在合成凝膠時還加入四甲基乙二胺作為加速劑。
聚丙烯醯胺凝膠具有三維網狀結構，能起分子篩作用。用它作電泳支援物，對樣品的分離不僅取決於各組分所帶電荷的多少，也與分子大小有關。凝膠網孔的大小主要受成膠物的總濃度及acr和bis的比例的影響。
一般電泳採用成膠物質總濃度為7.5%，此濃度稱為標準凝膠濃度。如果改變總膠濃度，也應相應改變acr和bis的比例。
2．不連續聚丙烯醯胺凝膠圓盤電泳的原理根據凝膠各部分緩衝液的種類及ph值，孔徑大小是否相同等，可分為連續系統和不連續系統聚丙烯醯胺凝膠電泳（page）。連續系統是指電泳槽內緩衝液的ph值與凝膠中的相同，不連續系統則不同。
不連續圓盤電泳一般是在小玻璃管內進行的。把三種性質不完全一樣的聚丙烯醯胺凝膠重疊起來。上層為樣品膠，中間為濃縮膠，這兩層膠的凝膠濃度為3%是大孔膠，應用tris-hcl緩衝液，其ph6.
7。下層是分離膠，此層凝膠總濃度為7.5%，是小孔膠，也用tris-hcl緩衝液，ph8.
9。上下電泳槽緩衝液是tris-甘氨酸緩衝液，ph=8.3。
由於凝膠的孔徑和緩衝液的ph值不同，產生濃縮效應、電荷效應和分子篩效應，使電泳的靈敏度、解析度提高。
（1）濃縮效應：無論哪種電泳方式，要想得到良好的分離效果，電泳開始前必須使樣品中各種成分同處於同一起跑線上。樣品加入後顆粒分散，不能從同一起點開始電泳，但樣品通過濃縮膠被濃縮成高濃度的樣品薄層，使顆粒同時開始電泳。
其機理是樣品膠及濃縮膠的tris-hcl緩衝液ph=6.7，電泳時，hcl全部電離為cl-，而電泳槽內tris-甘氨酸緩衝液ph=8.3，甘氨酸等電點pi=6.
0，電泳時，甘氨酸僅極少部分電離為甘氨酸負離子（gly-），一般血清蛋白質點約pi=5.0，也解離為蛋白質負離子（pr-），其解離度比hcl小，比甘氨酸大。通電後，這三種離子同時向正極泳動，有效泳動率是cl- ＞pr- ＞gly-，電泳時開始時，cl-泳動最快（稱快離子），很快超過pr-，泳動到最前面，gly-泳動最慢（稱慢離子），泳動到最後，pr-介於其間，被濃縮成一個狹小的樣品薄層。
這種濃縮作用可使蛋白質濃縮數百倍。血清蛋白在紙上電泳和醋酸纖維素薄膜電泳上僅可分成5～7個組分。而在聚丙烯醯胺凝膠電泳上則可以分為20～30個成分。
（2）電荷效應：蛋白質樣品在介面處被濃縮成一狹窄的樣品薄層，進入分離膠。由於各種蛋白質分子的等電點不同，在同一ph的緩衝液中所帶有效電荷不同，因而泳動率也不同，因此各種蛋白質就按泳動率快慢順序排列成一個一個圓盤狀的蛋白質區帶。
（3）分子篩效應：各種蛋白質分子由於分子大小和構象不同，因而通過一定孔徑的分離膠時所受的摩擦力不同，受阻滯的程度不同，表現的泳動率的不同而被分開。即使蛋白質所帶的淨電荷相似，也會由於分子篩效應被分開。
【器材和試劑】
1． 器材電泳儀、圓盤電泳槽、微量加樣器、注射器、50ml小燒杯
2． 試劑
（1）30%丙烯醯胺儲存液：丙烯醯胺30.0g，甲叉雙丙烯醯胺0.8g，加水至100ml，棕色瓶4℃儲存。
（2）催化劑（10％過硫酸銨）：過硫酸銨1g 加水至10ml，臨用前現配。
（3）加速劑：四甲基乙二胺 (temed）
（4）分離膠緩衝液（ph8.8）：取三羥甲基氨基甲烷（tris ）36.3g，加入1 mol /l hcl 48ml ，再加蒸餾水至100ml， 4℃儲存。
（5）濃縮膠緩衝液（ph6.8）：取6.0g tris，用1 mol /l hcl 48 ml，再加蒸餾水至1000ml，4℃儲存。
（6）電泳緩衝液（ph8.3）：取28.8g甘氨酸，6.0g tris，分別溶解後，加蒸餾水到100ml ，4℃儲存。
(7)染色液：考馬斯亮藍r-2500.46g、甲醇（可用無水乙醇代替）110ml、28ml冰乙酸，tritonx-100 1ml,溶解後補足水至總體積400ml。
（8）脫色液（30%甲醇、7%乙酸）：甲醇（可用無水乙醇代替）110ml，冰乙酸28ml，tritonx-100 8ml,補足水至400ml。
（9）儲存液 : 7%冰醋酸。
（10）樣品稀釋液：濃縮膠緩衝液25 ml加入蔗糖10g及0.05％溴酚藍5ml，最後加水至100ml。
【操作步驟】
1．凝膠柱的製備
（1）取兩端已有金鋼砂磨平的10cm×0.6cm 的玻璃管。在距一端7cm和7.5cm處，各劃一條線。插入橡皮墊中，垂直安放於試管架中。
（2）按下表配製分離膠，迅速用滴管將其沿管壁加入玻璃管內，至7 cm畫線處。
分離膠(ml)
濃縮膠(ml)
30%丙烯醯胺
2.50
1.00
分離膠緩衝液(ph8.8)
1.25
—濃縮膠緩衝液(ph6.8)
—1.25
蒸餾水6.20
7.65
temed
0.05
0.05
10%過硫酸銨
0.05
0.05
總體積10
10丙烯醯胺濃度（g%）
7.53.0
（3）隨即用5ml注射器經針頭沿玻璃管壁加入蒸餾水約0.5cm高度，加水時要緩慢，儘量減少凝膠表面的震動與混合。靜置，待凝膠聚合後(約20min)，去除水相，然後用吸水紙吸乾殘餘的液體。
（4）按上表配製濃縮膠，立即用滴管沿凝膠管壁加至7.5cm處，並隨即沿管壁緩慢加入蒸餾水約0.5cm高度，靜置20分鐘。
2．樣品配製正常入血清0.3ml，加入樣品稀釋液1.7ml，輕搖混勻。
3．電泳
（1）將上述製備好的凝膠管分別插入上電泳槽的橡膠塞孔中，高出槽底。
（2）下電泳槽加入10倍稀釋的電泳緩衝液，隨後放入帶凝膠管的上電泳槽。
（3）加樣：用微量注射器取樣品液加30μl ，沿管壁慢慢加在濃縮膠面上，再用緩衝液沿管壁緩慢加在樣品液上（防止與樣品液混合稀釋），直到加滿玻璃管，在電泳槽先加入少量緩衝液，檢查一下是否漏水，如不漏水，加入適量緩衝液，然後將帶電極的蓋放好。
（4）電冰：將上層電極糟的電極接在電泳儀的負極、下層電極糟的電極接在電泳儀的正極、接好電源。調節電流為lma /管。
待示蹤劑進入分離膠時，調節電流為3ma/管。當示蹤劑移至距玻璃管下口時，停止電泳。
4．剝膠取下凝膠管，用帶有10cm 長針頭的注射器，內裝蒸餾水做潤滑劑，沿管壁插入管內，邊注入水邊旋轉玻璃管。直至膠柱與管壁分開。然後用吸耳球輕輕在膠管的一端加壓，使凝膠從玻璃管中緩慢滑出。
5．固定將膠柱移入12.5%的三氯乙酸溶液中，固定10min。向裝有凝膠柱的試管中加入染色液，
6.染色與脫色將固定後的凝膠柱移入染色液， 60℃水浴中染色10～20min，隨後移入脫色液中，60℃脫色30～60min。
7.儲存將脫色後的凝膠柱移入7%冰乙酸溶液中，密封儲存，觀察結果, 記錄血清蛋白質經聚丙烯醯胺凝膠電泳可分多少區帶。
【注意事項】
1．acr和bis都是神經性毒劑，對**有刺激作用、但在形成凝膠後則無毒，操作時應儘量避免接觸**，並注意洗手。
2．蛋白加樣量要合適。加樣量太少，條帶不清晰；加樣量太多則泳道超載，條帶過寬而重疊，甚至覆蓋至相鄰泳道。
3．過硫酸銨的主要作用是提供自由基引發丙烯醯胺和雙丙烯醯胺的聚合反應，故一定要新鮮，貯存過久的過硫酸銨商品不能使用。此外，10%過硫酸銨必須現用現配，4℃冰箱貯存不超過48h。
4.灌製凝膠時，應避免產生汽泡，因為汽泡會影響電泳分離效果。
5.剛灌注分離膠混合溶液後，應在分離膠液麵上加1～2cm高的水層，以阻隔空氣。膠液麵上加水層時要特別小心，緩緩疊加，以免沖壞凝膠的膠面。
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